Biopolym. Cell. 1996; 12(6):116-119.
Мембранотропний ефект бензолу в мікросомах печінки щурів
1Суходуб А. Л.
  1. Інститут біохімії ім. О. В. Палладіна НАН України
    вул. Леонтовича, 9, Київ, Україна, 01601

Abstract

У роботі досліджено вплив бензолу на деякі параметри, що характеризують структурно-функціональний стан мікросомних мембран. Показано, що дворазове введення бензолу щурам cамцям лінії. Вістар не призводитьдо суттєвих змін у вмісті мікросомних гемопротеїдів, проте спостерігається достовірне довгохвильове зміщення максимума поглинання диференційного спектра цитохрому Р-450, а також зниження глюкозо-6-фосфатазної активності (Г-6-Фази) та збільшення ступеня гасіння флюоресценції АНС іонами Си(II). Інкубація мікросомної суспензії в умовах in vitro приводила до підвищеного накопичення малонового діальдегіду (МДА) та до інактивації Г-6-Фази. Інкубація в аналогічних умовах, але у присутності бензолу також викликала інактивацію Г-6-Фази, але інтенсивність накопичення МДА була значно меншою, ніж у варіанті без добавок. Додавання у середовище інкубації, окрім бензолу, НАДФН суттєво послаблювало інактивуючу дію ксенобіотика на Г-6-Фазу. Висунуто припущення стосовно того, що введення ксенобіотика призводить до одночасного протікання у мембранах мікросом процесів розпаду окремих ізоформ цитохрому Р-450 та синтезу нових, при цьому мають місце деякі зміни в організаціїфосфоліпідногобіиіару. Результатидослідів in vitro дозволяють зробити висновок, що активація процесів метаболізму бензолу значно послаблює його мембранотропну дію.

References

[1] Gubsky YuI, Dolgo-Saburov VV, Khrapak VB. Chemical disaster and ecology. Kiev: Zdorov'e, 1993. 224 p.
[2] Golikov SN, Sanotskiy IV, Tiunov LA. General mechanisms of toxic action. L.: Meditsina, 1986. 280 p.
[3] Lemeshko VV. [Microsomal oxidation system in the course of development and aging]. Biokhimiia. 1980;45(11):1964-9.
[4] Omura T, Sato R. The carbon monoxide-binding pigment of liver microsomes. II. Solubilization, purification, and properties. J Biol Chem. 1964;239:2379-85.
[5] Paperno T. Ya, Pozdnyakov VP, Smirnova AA Elagin LM Physico-chemical research methods for organic and biological chemistry. M.: Prosveshchenie, 1977; 176 p.
[6] Rybal'chenko VK, Kogan MI. Membrane Structure and Function. Kiev: Vyshcha shkola, 1988. 300 p.
[7] Vladimirov YuA, Archakov AI. Lipid peroxidation in biological membranes. Moscow: Nauka, 1972; 252 p.
[8] Miller GL. Protein determination of large numbers of samples. Anal Chem. 1959;31(5):964–964.
[9] Kato S, Onda M, Matsukura N, Tokunaga A, Tajiri T, Kim DY, Tsuruta H, Matsuda N, Yamashita K, Shields PG. Cytochrome P4502E1 (CYP2E1) genetic polymorphism in a case-control study of gastric cancer and liver disease. Pharmacogenetics. 1995;5 Spec No:S141-4.
[10] Saprin AN. Detoxification of xenobiotics in an organism. Itogi nauki i tekhniki. Moscow, VINITI (series General probl Phys-chem Biol). 1990;22:31-122.
[11] Lakowicz JR, Principles of Fluorescence Spectroscopy. Plenum Press, New York, London, 1983.
[12] Gubskiy YuI. Correction of chemical liver injury. Kiev: Zdorov'ya, 1989. 168 p.