Biopolym. Cell. 2010; 26(1):56-61.
Молекулярна та клітинна біотехнології
Оптимізація біоселективної мембрани амперометричного ензимосенсора на основі глюкозооксидази із застосуванням багатошарових карбонових нанотрубок, модифікованих аміногрупами
1Білоіван О. А., 1Рогальова Н. С., 1Корпан Я. І.
  1. Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
    Вул. Академіка Заболотного, 150, Київ, Україна, 03680

Abstract

Мета. Дослідити можливість застосування багатошарових карбонових нанотрубок, модифікованих аміногрупами (БНТ-NH2), для створення чутливих елементів амперометричного біосенсора на основі іммобілізованих оксидоредуктаз, зокрема глюкозооксидази (ГОД), та вивчити електрохімічні властивості отриманих мембран. Методи. Експерименти проведено з використанням амперометричних методів за допомогою приладу μStat 200 («DropSens», Іспанія). Ферменти іммобілізували у випарах глутарового альдегіду. Результати. Оптимізовано метод формування біоселективної матриці біосенсора на основі іммобілізованої ГОД з БНТ-NH2 на поверхні золотих амперометричних електродів. Визначено оптимальні умови роботи біосенсора на ії основі. Висновки. Показано, що включення БНТ до біоселективної матриці біосенсора покращує його аналітичні характеристики: сприяє підвищенню величини сигналу та розширенню лінійного діапазону для встановлення рівня глюкози, дає можливість визначати субстрат у широких межах значень робочого потенціалу).
Keywords: багатошарові вуглецеві нанотрубки, модифіковані аміногрупами, амперометричний біосенсор, оксидоредуктази, глюкозооксидаза

References

[1] Agui L., Yanez-Sedeno P., Pingarron J. M. Role of carbon nanotubes in electrochemical chemistry. A review Anal. Chim. Acta 2008 622, N 1–2 P. 11–47.
[2] Sotiropoulou S., Gavalas V., Vamvakaki N. A., Chaniotakis N. A. Novel carbon materials in biosensor system. Biosensors and Bioelectronics 2003 18, N 2–3 P. 211–215.
[3] Sotiropoulou S., Chaniotakis N. A. Carbon nanotube arraybased biosensor Anal. Bioanal. Chem 2003 375, N 1 P. 103–105.
[4] Sheng Q., Zheng J. Bienzyme system for the biocatalyzed deposition of polyaniline templated by multiwalled carbon nanotubes: A biosensor design Biosensors and Bioelectronics 2009 24, N 6 P. 1621–1628.
[5] Guan W. J., Li Y., Chen Y.-Q., Zhang X.-B., Hu G.-Q. Glucose biosensor based on multi-wall carbon nanotubes and screen printed electrodes. Biosensors and Bioelectronics 2005 21, N 3 P. 508–512.
[6] Starodub N. F., Hustochka L. N., Lazarenko A. V. Bubryak O. A., Terentev A. G., El'skaya A. V. Integration of biological material in the electrochemical biosensor devices. Anal. Chem. USSR. 1990; 45, pt 2 P. 1038–1044.
[7] Kanukov V. N., Strekalovskaya A. D., Kil'kinov V. I., Bazarova N. V. Materials for modern medicine: Tutorial Orenburg: SOU GEA, 2004 113 p.
[8] Danyleyko L. V., Schuvailo O. N., Arkhypova V. M., Soldatkin A. P., Dzyadevych S. V. Development of amperometric enzyme biosensor based on carbon fibre electrode and immobilized glucose oxidase Biopolym. Cell. 2003; 19, N 1 P. 76–80.
[9] Schuvailo O. N., Danyleyko L. V., Arkhypova V. M., Dzyadevych S. V., El’skaya A. V., Cespuglio R., Soldatkin A. P. Develop ment of microbiosensors based on carbon fibre for in vivo determination of glucose, acetylcholine and choline Biopolym. Cell. 2002; 18, N 6 P. 489–495.
[10] Immobilised cells and enzymes. A practical approach. Ed. J. Woodward Moscow: Mir, 1988 215 p.
[11] Shkotova L. V., Soldatkin A. P., Dzyadevych S. V. Adaptation of amperometric enzyme biosensor for glucose analysis in wine Ukr. Biokhim. Zh. 2004 76, N 3 P. 114–121.
[12] Davidova M. E., Kurova V. S., Cuhachyova M. V., Kupletskaya M. B., Riabov A. D., Netrusov A. I. Stability and catalytic properties of glucose oxidase from Penicilliu funiculosum G-15. Vestn. MGU, set 2, Chemistry 2002 43, N 6 P. 366–370.
[13] Trevan M. D. Immobilized enzymes Moscow: Mir, 1983 P. 47–51.