Biopolym. Cell. 2015; 31(6):455-457.
Молекулярна та клітинна біотехнології
Ефект антибіотика цефтриаксона на елімінацію Agrobacterium tumefaciens штаммів ABI та GV3101
1Горбатюк І. Р., 1Гнатюк І. С., 1Банникова М. О.
  1. Інститут клітинної біології та генетичної інженерії НАН України
    вул. Академіка Заболотного, 148, Київ, Україна, 03680

Abstract

Мета. З’ясувати за якої концентрації антибіотик цефтриаксон з групи β-лактамів викликає елімінацію штамів ABI та GV3101 Agrobacterium tumefaciens. Методи. Метод дифузії з дисків. Результати. Для елімінації клітин Agrobacterium tumefaciens штаму АВІ антибіотик цефтриаксон використано вперше. Для обох досліджуваних штамів агробактерії (АВІ та GV3101) спостерігалися однакові зони ігібування за використання розчину 400 мг/л цефтриаксону та 500 мг/л цефотаксиму. Висновки. Цефтриаксон пригнічує ріст агробактерій більш ефективно, ніж цефотаксим. Концентрація цефтриаксону для еліміннації штамів АВІ та GV3101 Agrobacterium tumefaciens – 400 мг/л.
Keywords: цефтриаксон, Agrobacterium tumefaciens, елімінація

References

[1] Demain AL, Elander RP. The beta-lactam antibiotics: past, present, and future. Antonie Van Leeuwenhoek. 1999;75(1-2):5-19.
[2] Tran TN, Sanan-Mishra N. Effect of antibiotics on callus regeneration during transformation of IR 64 rice. Biotechno­l Rep. 2015;7:143–9.
[3] Asbel LE, Levison ME. Cephalosporins, carbapenems, and monobactams. Infect Dis Clin North Am. 2000;14(2):435-47.
[4] Yarizade A, Aram F, Niazi A, Ghasemi Y. Evaluation of effect of β-lactam antibiotics on suppression of different strains of Agrobacterium tumefaciens and on wheat mature embryo culture. Iran J Pharm Sci. 2012; 8(4):267–76.
[5] Farzaneh A, Adel Y, Ali N, Younes G. Determine effective concentrations of β-lactam antibiotics against three strains of Agrobacterium tumefaciens and phytotoxicity on Tomato and Tobacco. Int J Agron Plant Prod. 2013;4 (11):2919–25
[6] Dubrovna OV, Morgun BV, Bavol AV. Wheat Biotechnology: cell selection and genetic engineering. K.: Logos, 2014;375 p.
[7] Tang H, Ren Z, Krczal G. An evaluation of antibiotics for the elimination of Agrobacterium tumefaciens from walnut of somatic embryos and for the effects on the proliferation of somatic embryos and regeneration of transgenic plants. Plant Cell Rep. 2000;19(9):881–7.
[8] Grzebelus E, Skop L. Effect of β-lactam antibiotics on plant regeneration in carrot protoplast cultures. In Vitro Cell Dev Biol Plant. 2014;50(5):568-575.
[9] Fallah-Ziarani M, Haddad R, Garoosi Gh, Jalali M. Agrobacterium-mediated transformation of cotyledonary leaf of lettuce (Lactuca sativa L.) by the GCHI gene. Iran J Gen Plant Breed. 2013;2(2): 47–55.
[10] Zhao X, Zhan L-P, Zou X-Z. Improvement of cold tolerance of the half-high bush Northland blueberry by transformation with the LEA gene from Tamarix androssowii. Plant Growth Regul. 2011; 63(1):13–22.
[11] Priya A, Pandian SK, Manikandan R. The effect of different antibiotics on the elimination of Agrobacterium and high frequency Agrobacterium-mediated transformation of indica rice (Oryza sativa L.). Czech J Genet Plant Breed. 2012; 48(3):120–30
[12] Bertani G. Studies on lysogenesis. I. The mode of phage liberation by lysogenic Escherichia coli. J Bacteriol. 1951;62(3):293-300.
[13] Palla KJ, Pijut PM. Agrobacterium-mediated genetic transformation of Fraxinus americana hypocotyls. Plant Cell Tiss Organ Cult. 2015; 120(2):631–41.
[14] Ling H-Q, Kriseleit D, Ganal MW. Effect of ticarcillin/potassium clavulanate on callus growth and shoot regeneration in Agrobacterium-mediated transformation of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.). Plant Cell Rep. 1998; 17(11):843–47.
[15] Mamidala P, Nanna R. Influence of antibiotics on regeneration efficiency in tomato. Plant Omics J. 2009; 2(4):135–40.
[16] Han S-N, Oh P-R, Kim H-S, Heo H-Y, Moon JC, Lee S-K, Kim K-H, Seo Y-W, Le B-Me. Effects of antibiotics on suppression of Agrobacterium tumefaciens and plant regeneration from wheat embryo. J Crop Sci Biotech. 2007; 10 (2):92–8.
[17] Park S-U, Facchini PJ. Agrobacterium-mediated genetic transformation of California poppy, Eschscholzia californica Cham., via somatic embryogenesis. Plant Cell Rep. 2000; 19 (10): 1006-1012.