Biopolym. Cell. 1992; 8(2):37-43.
http://dx.doi.org/10.7124/bc.000318
Структура та функції біополімерів
Вплив іонів Mg2+ і тРНК на неоднозначність трансляції синтетичних матриць у безклітинних білоксинтезуючих системах з різних штамів Saccharomyces cerevisiae
1Шульга Н. І.
  1. Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
    Вул. Академіка Заболотного, 150, Київ, Україна, 03680

Abstract

Отримала та охарактеризовано безклітинні білоксинтезуючі системи (S-30) з штамів S. cerevisiae вихідних (12В-П4280 і 125А-П2156) та супрерорних (3-12В-П4280 і 4-125A-П256), які несуть мутації у гені sup-1 (sup-45) і характеризуються більш низькою точністю трансляції in vivo у порівнянні з вихідними штамами. Дослідження помилкового включення лейцину до продукту трансляції прлі(1!) показано, що всупереч очікуванням, S-30 системи з вихідних штамів мали меншу точність у порівнянні з S-30 системами з супресорних штамів. Аналіз причин цих відмін nQказав, иіо в їх основі лежить різний рівень утворення фенілаланіл- та лейцил-тРНК і відповідна зміна співвідношення цих аміноацил-тРНК у системах різного походження. Цей фактор може бути нівельовано додаванням до системи над лишка сумарної тРНК дріжджів. За умов дефіциту тРНК у системах виявлено індукцію іонами Mg2+ трансляції полі(dТ), котpa помітно знижувалася при насиченні системи тРНК. У зв'язку з цим передбачається, що не тільки підвищення концентрації Mg2+, але й нестача тРНК у пробах сприяє зростанню неоднозначності трансляції полі(U).
Повний текст: (PDF, російською)

References

[1] Transfer RNA: Biological aspects. Eds D. Soil, J. N. Abelson, P. R. Schimmel. New York : Cold Spring Harbor Lab., 1980: 379-449.
[2] Inge-Vechtomov SG. Reversion to prototrophy in yeast requiring adenine. Vestnik Len Gos Univ. 1961; 2:112.
[3] Inge-Vechtomov SG, Andrianova VM. Recessive supersuppressors in yeast. Genetika. 1970; 6(11):103-15.
[4] Ter-Avanesian MD, Inge-Vechtomov SG, Surguchev AP, Smirnov VN. Genetic control of ambiguity translation in eukaryotes. Usp Sovrem Biol.. 1984. 97(3):341-53.
[5] Surguchev AP, Smirnov VN, Ter-Avanesian MD, Inge-Vechtomov SG. Ribosomal supression in eukaryotes. Physicochem Biol Rev. 1984; 4: 147.
[6] Tuite MF, Plesset J. mRNA-dependent yeast cell-free translation systems: theory and practice. Yeast. 1986;2(1):35-52.
[7] Zubay G. The isolation and fractionation of soluble ribonucleic acid. J Mol Biol. 1962;4(5):347–56.
[8] Chanda PK, Kung HF. In vitro synthesis of biologically active human leukocyte interferon in a RNA-dependent system from Saccharomyces cerevisiae. Proc Natl Acad Sci U S A. 1983;80(9):2569-73.
[9] Grunberg-Manago M, Dondon J. Influence of PH and s-RNA concentration on coding ambiguities. Biochem Biophys Res Commun. 1965;18:517-22.
[10] El'skaya AV, Soldatkin AP. The accuracy of poly(U) translation by different eukaryotic tRNAs. FEBS Lett. 1983;164(1):93-6.
[11] Pingoud A, Gast FU, Peters F. The influence of the concentrations of elongation factors and tRNAs on the dynamics and accuracy of protein biosynthesis. Biochim Biophys Acta. 1990;1050(1-3):252-8.
[12] Berestetskaya YUV, Surguchev AP. Increased level of error functioning ribosome yeast strains Saccharomyces cerevisiae, carrying the recessive mutation suppressor. Nauchnye Doki Vyss Shkoly Biol Nauki. 1983; (2):18-21.
[13] Eustice DC, Wakem LP, Wilhelm JM, Sherman F. Altered 40 S ribosomal subunits in omnipotent suppressors of yeast. J Mol Biol. 1986;188(2):207-14.
[14] Berestetskaya YUV, Smirnov VN, Surguchev AP. Two-dimensional gel electrophoresis of ribosomal proteins from strains Saccharomyces cerevisiae, carrying a recessive mutation in the suppressor. Nauchnye Doki Vyss Shkoly Biol Nauki. 1981;(3)20-4.
[15] Fominykh ES, Surguchev AP. Increase in the number of ribosomal subparticles in yeast strains bearing non-sense-suppressor mutations. Nauchnye Doki Vyss Shkoly Biol Nauki. 1982;(3):13-6.