Biopolym. Cell. 1992; 8(5):48-54.
Генно-інженерна біотехнологія
Вектори клонування для Escherichia coli та ендоризосферного азотфіксатора Klebsiella oxytoca VN13 на основі реплікону природної hsd плазміди pZE8
1Алексєєв М. Ф., 1Ковтунович Г. Л., 1Кравець А. М., 2Солонін А. С.
  1. Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
    Вул. Академіка Заболотного, 150, Київ, Україна, 03680
  2. Інститут біохімії і фізіології мікроорганізмів ім. Г. К. Скрябіна
    пр-т Науки, 5, Пущино, Московська область, Російська Федерація, 142290

Abstract

На основі реплікону природної hsd пмзміди Citrobacter freundii сконструйовано векторні плазміди для K. oxytoca VN13 та Е. coli. Вектори рКАS18 і pKAS19B мають селективний маркер стійкості до канаміцицу та полШнкёри плазмід pUC18 i pUC19 відповідно. Плазміди pMG1k та pMG21k призначені для клонування в унікальному Pst1-сайті гена рестриктази EcoRV.

References

[1] Nguyen TNH, Ton TNB, Tarasenko VA, Kozyrovskaja NA. Nitrogen-fixing bacteria colonize rice root xylema. Biopolym Cell. 1989; 5(2):97-9.
[2] Kozyrovskaya NA, Makitruk VL, Ruckdashell E. Nitrogen-fixing Klebsiella species produce indole-3-acetic acid. Biopolym Cell. 1990; 6(6):93-6.
[3] DNA cloning: a practical approach. Ed. DM Glover. Oxford, IRL Press, 1985; Vol. 1 and 2: 435 p
[4] Zaĭtsev EN, Zaĭtseva EM, Bakhlanova IV, Gorelov VN, Kuz'min NP. Cloning and characteristics of recA gene in Pseudomonas aeruginosa. Genetika. 1986;22(11):2721-7.
[5] Yanisch-Perron C, Vieira J, Messing J. Improved M13 phage cloning vectors and host strains: nucleotide sequences of the M13mp18 and pUC19 vectors. Gene. 1985;33(1):103-19.
[6] Vieira J, Messing J. The pUC plasmids, an M13mp7-derived system for insertion mutagenesis and sequencing with synthetic universal primers. Gene. 1982;19(3):259-68.
[7] Gorovits RL, Solonin AS. Plasmid vectors of "insertion inactivation" of the trimethoprim resistance marker. Genetika. 1987;23(3):397-404.
[8] Fellay R, Frey J, Krisch H. Interposon mutagenesis of soil and water bacteria: a family of DNA fragments designed for in vitro insertional mutagenesis of gram-negative bacteria. Gene. 1987;52(2-3):147-54.
[9] Fomenkov AI, Kramarov VM, Andreev LV, Mochalov VV, Smolyaninov VV, Matvienko NI. Isolation and properties of a new site-specific endonuclease Bme142I from Bacillus megaterium 142. Nucleic Acids Res. 1988;16(21):10399.
[10] Maniatis T, Fritsch EF, Sambrook J. Molecular cloning: a laboratory manual. New York: Cold Spring Harbor Lab, 1982; 545 p.
[11] Alexeyev MF, Gunkovskaya NV. Method for rapid transformation of enterobacteria and some factors influencing its efficiency. Biopolym Cell. 1992; 8(3):46-50.
[12] Paton EB. Mechanisms of regulation of gene expression of ribosomal proteins L11, L7, L10 and L7/12 Escherichia coli: Author. dis. ... Dr. biol. nauk. Kyiv, 1990. 44.
[13] Miller JH. Experiments in molecular genetics. Cold Spring Harbor Laboratory, 1972, 466 p.
[14] Bougueleret L, Schwarzstein M, Tsugita A, Zabeau M. Characterization of the genes coding for the Eco RV restriction and modification system of Escherichia coli. Nucleic Acids Res. 1984;12(8):3659-76.
[15] Balbás P, Soberón X, Merino E, Zurita M, Lomeli H, Valle F, Flores N, Bolivar F. Plasmid vector pBR322 and its special-purpose derivatives--a review. Gene. 1986;50(1-3):3-40.
[16] Villa-Komaroff L, Efstratiadis A, Broome S, Lomedico P, Tizard R, Naber SP, Chick WL, Gilbert W. A bacterial clone synthesizing proinsulin. Proc Natl Acad Sci U S A. 1978;75(8):3727-31.
[17] Maloy SR, Nunn WD. Selection for loss of tetracycline resistance by Escherichia coli. J Bacteriol. 1981;145(2):1110-1.
[18] Craine BL. Novel selection for tetracycline- or chloramphenicol-sensitive Escherichia coli. J Bacteriol. 1982;151(1):487-90.