Biopolym. Cell. 2016; 32(3):173-178.
Структура та функції біополімерів
Функціональна комплементація консервативного некодуючого элементу (CNE) вірусу ядерного полиедрозу Autographa californica гетерологічним CNE з віруса ядерного поліедрозу Malacosoma neustria
1Кіхно І. М., 1Макаренко В. Е., 1Кашуба В. І.
  1. Інститут молекулярної біології і генетики НАН України
    Вул. Академіка Заболотного, 150, Київ, Україна, 03680

Abstract

Мета. Оцінити функціональну консервативність бакуловірусного CNE (conserved non protein-coding element). Вивчити функціональне заміщення консервативного некодуючого елемента (CNE) вірусу ядерного поліедроза Autographa californica на СNE вірусу ядерного поліедрозу Malacosoma neustria. Методи. Видалення CNE з вірусного генома і його заміщення гетерологічним CNE було виконано з використанням бакмідной технології. Трансфекційно-інфекційний аналіз був застосований для дослідження поширення рекомбінантного вірусу від клітини до клітини. Результати. Було сконструйовано рекомбінантний геном віруса ядерного поліедрозу Autographa californica, що несе в своєму складі CNE віруса ядерного поліедрозу Malacosoma neustria замість власного CNE. Показано, що рекомбінантний вірус здатний передавати інфекцію в культурі клітин. Висновки. Абсолютно обов’язкова функкція CNE є консервативною для представників I і II груп роду Alphabaculovirus.
Keywords: Бакуловірус, бакуловірусний CNE, функціональна комплементація

References

[1] Herniou EA, Arif BM, Becnel JJ, Blissard GW, Bonning B, Harrison R, Jehl JA, Theilmann DA, Vlak JM. Family Baculoviridae. In: King AMQ, Adams MJ, Carstens EB, Lefkowitz EJ. Virus Taxonomy: Ninth Report of the International Committee on Taxonomy. Elsevier Inc. 2011:163-74
[2] Felberbaum RS. The baculovirus expression vector system: A commercial manufacturing platform for viral vaccines and gene therapy vectors. Biotechnol J. 2015;10(5):702-14.
[3] van Oers MM, Vlak JM. Baculovirus genomics. Curr Drug Targets. 2007;8(10):1051-68.
[4] Rohrmann GF, Pearson MN, Bailey TJ, Becker RR, Beaudreau GS. N-Terminal polyhedrin sequences and occluded Baculovirus evolution. J Mol Evol. 1981;17(6):329-33.
[5] Jehle JA, Blissard GW, Bonning BC, Cory JS, Herniou EA, Rohrmann GF, Theilmann DA, Thiem SM, Vlak JM. On the classification and nomenclature of baculoviruses: a proposal for revision. Arch Virol. 2006;151(7):1257-66.
[6] Zanotto PM, Kessing BD, Maruniak JE. Phylogenetic interrelationships among baculoviruses: evolutionary rates and host associations. J Invertebr Pathol. 1993;62(2):147-64.
[7] Pearson MN, Rohrmann GF. Transfer, incorporation, and substitution of envelope fusion proteins among members of the Baculoviridae, Orthomyxoviridae, and Metaviridae (insect retrovirus) families. J Virol. 2002;76(11):5301-4.
[8] Kikhno I. Identification of a conserved non-protein-coding genomic element that plays an essential role in Alphabaculovirus pathogenesis. PLoS One. 2014;9(4):e95322.
[9] Bulach DM, Kumar CA, Zaia A, Liang B, Tribe DE. Group II nucleopolyhedrovirus subgroups revealed by phylogenetic analysis of polyhedrin and DNA polymerase gene sequences. J Invertebr Pathol. 1999;73(1):59-73.
[10] Luckow VA, Lee SC, Barry GF, Olins PO. Efficient generation of infectious recombinant baculoviruses by site-specific transposon-mediated insertion of foreign genes into a baculovirus genome propagated in Escherichia coli. J Virol. 1993;67(8):4566-79.
[11] O'Reilly DR, Miller LK, Luckow VA. Baculovirus expression vectors: A laboratory manual Oxford University Press. 1993; 368 p.
[12] Lin G, Blissard GW. Analysis of an Autographa californica nucleopolyhedrovirus lef-11 knockout: LEF-11 is essential for viral DNA replication. J Virol. 2002;76(6):2770-9.
[13] Wang M, Wang J, Yin F, Tan Y, Deng F, Chen X, Jehle JA, Vlak JM, Hu Z, Wang H. Unraveling the entry mechanism of baculoviruses and its evolutionary implications. J Virol. 2014;88(4):2301-11.